1.響應GSH降解的納米顆粒的合成與表征

首先在前人研究的基礎上合成了固體二氧化硅納米顆粒（記為sSiO₂ NPs）。之后，以sSiO₂ NPs為基礎合成了中空介孔有機硅納米顆粒（命名為HMONs）。BSA用于阻斷裝載在HMONs中的HCPT（HMONs@HCPT-COOH），以降低納米顆粒對正常細胞的細胞毒性。實驗表明，BSA能穩定地在HMONs表面組裝。

為了有效的加載siMCT-4，PEI被裝載到HMONs@HCPT-BSA-COOH的表面。后，將PEG-CDM引入HMONs@HCPT-BSA-PEI表面，延長血液循環時間。實驗表明成功合成了GSH降解中空介孔有機硅納米膠囊和PEG化PEI功能化BSA封阻的HMONs（HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG）。

2. 響應GSH的藥物釋放和納米顆粒吞噬

由于實體瘤的這種異常代謝，腫瘤細胞內會積累高劑量的還原性谷胱甘肽。基于實體腫瘤的特點，設計了一個納米藥物和siRNA傳遞系統，其具有弱酸性和GSH響應性（HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4）。HCPT釋放結果表明（圖2A），納米平臺具有良好的GSH響應能力。采用流式細胞術（FCM）（圖2B）和激光共聚焦掃描顯微鏡（CLSM）（圖2C，D）對納米顆粒的吞噬作用進行表征。由于CDM鍵的斷裂，暴露PEI可以增強B16F10的細胞攝取功效。PEG-CDM組對腫瘤微環境的弱酸反應并暴露PEI組。B16F10細胞呈現強正電荷促進吞噬作用，這與其他研究一致。在腫瘤細胞中，納米藥物和siRNA傳遞系統持續釋放化療藥物HCPT和siMCT-4，用于協同腫瘤化療免疫治療。

通過瓊脂糖凝膠阻滯試驗驗證納米顆粒負載siRNA的效果。結果表明，當納米顆粒與siRNA的重量比（w:w）為10：1時，siRNA可以*負載。終的重量比為20：1，以供進一步研究。通過免疫熒光（圖2E）和Western blotting實驗（圖2F）驗證了負載siMCT-4的納米顆粒對B16F10細胞中MCT-4表達的影響。結果表明，與其他組相比，負載siMCT-4的納米顆粒能有效抑制MCT-4的表達。

3.乳酸對體外巨噬細胞極化的影響

通過RAW264.7細胞與腫瘤細胞（B16F10細胞和4T1細胞）共培養實驗，驗證乳酸對體外巨噬細胞表型極化的影響（圖3A）。Western blotting檢測結果表明，HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4顯著沉默了B16F10細胞和4T1細胞中MCT-4的表達（圖3B）。經HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4處理后，共培養液（RAW264.7細胞與B16F10細胞共培養）中的細胞外乳酸含量較其他處理低（圖3C）。同時，B16F10細胞的胞內乳酸含量高于其他處理（圖3D）。以上結果與RAW264.7細胞與4T1細胞共培養模型的結果高度一致。上述實驗結果證明，HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4可以抑制MCT-4的表達，并進一步抑制B16F10細胞和4T1細胞的乳酸外流。

流式細胞儀檢測M1型標記物CD86和M2型標記物CD206的表達。結果提示HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4組M1型巨噬細胞比例明顯增加。HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4+forskolin組CD86表達下調，CD206表達上調。HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4+乳酸組也表現出與HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4組相反的趨勢，說明培養基中的乳酸在巨噬細胞表型極化中起著重要作用。此外，與僅用DMEM培養基組相比，B16F10或4T1細胞共培養組中CD86和CD206的表達略有上調（圖3E，F）。采用免疫熒光法檢測不同處理后CD86和CD206的表達情況。從CLSM圖像中可以看到HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4組CD86表達明顯增加，CD206表達明顯減少（圖3G，H）。其他組的結果及相關熒光定量統計（圖3I，J）與FCM檢測結果趨勢一致。以上結果表明，HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4在體外通過抑制乳酸外流顯著誘導RAW264.7細胞表型向M1型極化。

4.納米平臺的細胞活力和細胞毒性評價

本研究中，HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4在體外可顯著抑制B16F10和4T1細胞活力，誘導腫瘤細胞凋亡。Western blotting檢測不同處理后細胞凋亡相關蛋白的表達。WB結果顯示HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4+Forskolin和HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDMPEG@siMCT-4組顯著誘導B16F10細胞和4T1細胞中Bax的表達，但Bcl-2的表達受到抑制（圖4A），蛋白灰度定量統計結果一致（圖4B）。結果顯示，兩組均具有較高的細胞毒性，可顯著誘導腫瘤細胞凋亡。與其他組相比，也顯著抑制了B16F10和4T1細胞活力（圖4C）。為了進一步研究負載HCPT和siMCT-4的納米平臺的細胞毒性，作者使用Annexin V-FITC/PI細胞凋亡試劑盒確認不同處理后的細胞毒性（圖4D）。流式細胞術檢測結果提示兩組均能誘導腫瘤細胞凋亡，且有時間依賴性。HMONs-BSA-PEI-CDM-PEG具有輕微的細胞毒性。

5.利用納米平臺通過抑制腫瘤細胞內乳酸外流激活巨噬細胞M2到M1極化和恢復體內T細胞活性

為了驗證MCT-4在體內沉默的有效性，我們在各種治療后處死B16F10或4T1荷瘤Balb/c小鼠。對B16F10腫瘤組織（圖5A）和4T1腫瘤組織（圖5H）進行Western blotting檢測MCT-4的表達。結果顯示HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4+Forskolin和HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4組抑制了MCT-4的表達。此外，通過檢測腫瘤組織細胞中乳酸含量和TME中乳酸含量，證明通過抑制乳酸在體內的外流，腫瘤細胞中乳酸含量增加，TEM中乳酸含量降低。從相關結果（圖5C，D，I，J）中，作者發現HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM@siMCT-4+Forskolin和HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4組顯著抑制了B16F10和4T1荷瘤小鼠的乳酸外流量。

接下來作者研究了抑制乳酸外流對TAM表型極化和恢復體內CD8⁺T細胞活性的影響，結果表明HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4組明顯降低了M2型TAMs的百分比（圖5D，F，K，M），同時增加了M1型TAMs的能力（圖5E，F，L，M）。免疫熒光法檢測B16F10腫瘤組織中TAM標記物（CD11b）、M2型標記物（CD206）和M1型標記物（CD86）的表達。HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4組抑制了CD206的表達，誘導了CD86的表達，這與B16F10腫瘤組織的FCM檢測結果一致。檢測了B16F10或4T1腫瘤組織中Treg細胞的百分比，驗證了工程化的納米平臺清除免疫抑制TME的效率。以上結果證實HMONs@HCPT-BSA-PEICDM-PEG@siMCT-4在體內通過抑制乳酸外流的作用，有效地將TAMs的表型從M2型極化為M1型，降低Treg細胞的百分比，恢復CD8⁺T細胞的活性。

 6.體內對腫瘤組織免疫應答的恢復及對肺腫瘤轉移的抑制

進一步討論抑制乳酸外流在免疫抑制TME和激活體內免疫應答中的作用，相關結果表明，HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4組的相關免疫細胞比例明顯高于其他組（圖6A，B），證明HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4在體內通過抑制乳酸外流，顯著緩解免疫抑制TME，激活免疫應答。采用免疫熒光法檢測B16F10腫瘤組織中的免疫促進因子（IFNγ、TNF-α）和免疫抑制因子（Arg1、TGF-β），分析其抗腫瘤作用機制。根據CLSM圖像，HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4組顯著誘導免疫促進因子表達（圖6B），降低免疫抑制因子表達（圖6D）。對應的熒光定量統計（圖6H）與FCM和IF檢測結果趨勢一致。上述結果表明，在免疫抑制TME中，乳酸是主要的免疫調節因子。通過抑制乳酸外流可以有效地將免疫抑制型腫瘤轉化為“熱”型腫瘤，在體內實現免疫應答。

有研究表明，免疫抑制TME中乳酸含量與腫瘤細胞肺轉移密切相關。有報道使用Balb/c小鼠肺轉移模型來證明HMONs@HCPT-BSA-PEICDM-PEG@siMCT-4對B16F10細胞和4T1細胞肺轉移的影響（圖6C）。經不同處理后，肺組織圖像顯示HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4組明顯抑制肺轉移，減少了B16F10細胞（圖6D，E）和4T1細胞（圖6F，G）肺轉移結節的形成。此外，H&E染色結果還顯示HMONs@HCPT-BSAPEI-CDM-PEG@siMCT-4組B16F10細胞和4T1細胞通過抑制乳酸外流轉移到肺組織。

7.體內抗腫瘤效能

利用B16F10和4T1荷瘤小鼠研究HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDMPEG@siMCT-4在體內的抗腫瘤效能（圖7A）。從圖7B的荷瘤圖像來看，HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4組與其他組相比，腫瘤生長明顯受到抑制。相關腫瘤體積（V/V₀）結果（圖7C）與荷瘤小鼠圖像趨勢一致。腫瘤組織重量結果顯示HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4組體內抗腫瘤效果好（圖7D）。進一步研究體內腫瘤細胞的凋亡情況，圖7E和F證實HMONs@HCPT-BSAPEI-CDM-PEG@siMCT-4組明顯誘導體內腫瘤細胞凋亡。相關的荷瘤生存率結果表明HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDMPEG@siMCT-4具有顯著的抗腫瘤效果，并顯著延長荷瘤小鼠的生存時間。

接下來揭示了HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4對Balb/c小鼠的生物相容性和細胞毒性，荷瘤小鼠的體重證明HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4在體內具有良好的生物相容性。此外，HE染色圖像顯示HMONs@HCPT-BSAPEI-CDM-PEG@siMCT-4對主要臟器無毒副作用，而HCPT組肝臟毒性較輕，這與其他研究一致。

為了研究停止治療21天后腫瘤的復發，給4T1荷瘤小鼠用藥。從圖7E中4T1荷瘤小鼠的圖像來看，與其他組相比，HMONs@HCPT-BSA-PEICDM-PEG@siMCT-4組能顯著抑制腫瘤生長。相關腫瘤體積（V/V₀）結果（圖7F）與荷瘤小鼠圖像趨勢一致。腫瘤組織重量結果顯示，HMONs@ HCPT-BSA-PEI-CDM-PEG@siMCT-4組抗腫瘤效果優于其他組（圖7G）。相關的腫瘤體積（V / V₀）證明了HMONs@HCPT-BSA-PEI-CDMPEG@siMCT-4組在停止治療后激活了免疫反應而顯著抑制腫瘤復發。從這些結果來看，HMONs@HCPT-BSAPEI-CDM-PEG@siMCT-4在體內表現出良好的抗腫瘤效果，明顯延長荷瘤小鼠的生存時間，并有效抑制腫瘤復發。